單脫氫抗壞血酸還原酶（monodehydroasorbate reductase，MDHAR）

試劑盒說明書

分光光度法 50 管/48 樣

注意：正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。

測定意義：

MDHAR 催化 MDHA 還原生成 AsA，在抗壞血酸氧化還原代謝中具有重要作用。

測定原理：

MDHAR 催化 NADH 還原 MDHA 生成 AsA 和 NAD⁺，NADH 在 340 nm 有特征吸收峰，但是 NAD⁺沒有。通過測定 340 nm 光吸收下降速率，來計算出 MDHAR 活性。

實驗中所需儀器及設備：

研缽、冰、臺式離心機、紫外分光光度計、1mL 石英比色皿、可調式移液槍和雙蒸水試劑組成和配置：

試劑一：液體 50mL×1 瓶，4℃保存。

試劑二：液體 50mL×1 瓶，室溫保存。

試劑三：粉劑×1 瓶（棕色），4℃保存。臨用前加入 5mL 蒸餾水充分溶解。

試劑四：粉劑×1 瓶，4℃保存。臨用前加入 5mL 蒸餾水充分溶解。

試劑五：液體 25μL×1 瓶，4℃保存。臨用前加 5mL 試劑二充分溶解。

粗酶液提取：

1. 組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1mL 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 10min，取上清置冰上待測。

2. . 細菌、真菌：按照細胞數量（10⁴ 個）：試劑一體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建

議 500 萬細胞加入 1mL 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；8000g ，4℃離心 20min，取上清液置冰上混勻待測。

3. 血清等液體：直接測定。

MDHAR 測定操作：

1. 分光光度計預熱 30 min，調節波長到 340 nm，蒸餾水調零。

2. 試劑二在 25℃水浴鍋中預熱 30 min。

3. 依次在比色皿中加入 100μL 試劑三、100μL 試劑四、100μL 試劑五和 600μL 試劑二，最后加入 100μL 上清液，迅速混勻后于 340nm 比色，記錄 30s 和 150s 的吸光值 A1 和 A2，

△A=A1-A2。

MDHAR 活性計算公式：

(1). 按蛋白濃度計算

MDHAR 活性單位定義：25℃中每毫克蛋白每分鐘氧化 1nmol NADH 為 1 個酶活單位。 MDHAR (nmol/min /mg prot) = △A÷ε÷d×V 反總×10⁹]÷（Cpr×V 樣）÷T

= 804×△A ÷Cpr

(2). 按樣本質量計算

MDHAR 活性單位定義：25℃中每克樣本每分鐘氧化 1nmol NADH 為 1U。 MDHAR (nmol/min /g 鮮重) = △A÷ε÷d×V 反總×10⁹]÷（W×V 樣÷V 樣總）÷T

= 804×△A ÷W

（3）按細胞數量計算

MDHAR 活性單位定義：25℃中每 10⁴ 個細胞每分鐘氧化 1nmol NADH  為 1 個酶活單位。

MDHAR (nmol/min/10⁴ cell) = △A÷ε÷d×V 反總×10⁹÷（細胞數量×V 樣÷V 樣總）÷T = 804×△A ÷ 細胞數量

（4）按液體體積計算

MDHAR 活性單位定義：25℃中每毫升液體每分鐘氧化 1nmol NADH 為 1 個酶活單位。 MDHAR (nmol/min /mL) = △A÷ε÷d×V 反總×10⁹÷V 樣）÷T

= 804×△A

ε：NADH 摩爾消光系數，6220 L/mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V 反總：反應體系總體積， 1mL=0.001 L，V 樣：加入反應體系中上清液體積，100μL=0.1mL；Cpr：上清液蛋白濃度，mg/mL，蛋白質濃度需要另外測定，建議使用本公司蛋白質含量 BCA 試劑盒；V 樣總：加入提取液體積，1mL；W，樣本質量，g；T：反應時間，2min。

注意事項：

    臨用前配制的試劑未使用完的 4℃保存，3 天內使用完。

​