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植物蔗糖酶(sucrase)試劑盒說明書

點擊次數:1084 日期:2016/8/31 8:43:48

植物蔗糖酶(sucrase)試劑盒說明書
 
分光光度法 50 管/48 樣
 
測定意義:
 
蔗糖酶(EC 3.2.1.26是碳水化合物消化吸收的關鍵酶之一,能夠水解蔗糖變成相應的單糖而被機體吸收。
測定原理:
 
本試劑盒采用 3.5-二硝基水楊酸法測定蔗糖酶催化產生的還原糖的含量,由此可得出蔗糖酶水解速度。其原理是 3.5-二硝基水楊酸與還原糖共熱被還原成棕紅色的氨基化合物,在一定范圍內還原糖的量和反應液的顏色深度成正比。此法操作簡便、迅速、雜質干擾較小。
所需的儀器和用品:
 
可見分光光度計、沸水浴、可調式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
 
試劑的組成和配制:
 
提取液:液體 60mL×1 瓶,4℃保存;試劑一:液體 5mL×1 瓶,4℃保存;
 
試劑二:粉劑×1 瓶,4℃保存,用時每瓶加入 5mL 蒸餾水充分溶解,現配先用;試劑三:液體 5mL×1 瓶,常溫保存;
樣品測定的準備:
 
按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
加樣表和測定步驟:
 
試劑名稱(μL
 
對照管
 
測定管
試劑一
 
50
 
50
蒸餾水
 
100
 
 
樣本
 
 
 
100
試劑二
 
50
 
50
 
 
置于 25℃準確水浴 10min
 
 
 
 
 
 
試劑三
100
 
100
 
 
 
 
 
混勻, 100℃水浴 5min 左右(蓋緊,防止水分散失),冷卻至室溫
 
 
 
 
 
蒸餾水
700
 
700
 
 
 
 
 
 
混勻,520nm 蒸餾水調零,測定各管吸光值,ΔA=A 測定-A 對照,對照管只要做一管。
 
蔗糖酶活力計算:
 
1、標準條件下測定的回歸方程為 y = 0.1296x -0.12x 為標準品濃度(mg/mL),y 為吸光值。2、按照蛋白濃度計算單位定義:每 mg 組織蛋白每分鐘催化產生 1μg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
 
蔗糖酶活力(μg/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(V1×Cpr)÷T=771×(ΔA +0.12)÷Cpr3、按樣本鮮重計算單位定義:每 g 組織每分鐘催化產生 1μg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
 
蔗糖酶活力(μg/g 鮮重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=771×(ΔA +0.12) ÷W。10001mg/mL=1000μg/mL;V1:加入反應體系中樣本體積,0.1mL;V2:加入提取液體積,
1mLT:反應時間,10min Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g。

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